• Desarrollo y validación de nuevos métodos moleculares de diagnóstico para leishmaniasis y de pruebas rápidas para confirmar la infección por Leishmania.
• Identificación y caracterización de biomarcadores asociadas a la leishmaniasis visceral activa y curada. Desarrollo y evaluación de test de cura.
• Estudio de la patogénesis de la leishmaniasis en pacientes inmunodeprimidos.
• Desarrollo y evaluación de vacunas contra la leishmaniasis visceral humana y canina.
• Caracterización molecular de las cepas circulantes de Leishmania infantum.
• Estudio de reservorios silvestres y domésticos implicado en la trasmisión de la leishmaniasis visceral zoonótica.
• Estudios de vigilancia y epidemiología molecular de las leishmaniasis importadas.
• Caracterización molecular de las cepas circulantes de T. cruzi.
• Estudio de vigilancia y epidemiología de la trasmisión congénita de la enfermedad de Chagas en España.
• Desarrollo y validación de nuevos métodos diagnósticos y el seguimiento post-tratamiento de la enfermedad de Chagas.

• Proyectos
  • Marcadores de Memoria y Agotamiento celular como test de Cura/Recaída en el tratamiento de la Leishmaniasis Visceral. PI18CIII/00029 - AESI 2018. 2019-2021 IP: Dra. E. Carrillo.
  • Leishmaniasis asociada con la inmunoterapia anti-TNF-alfa. Estudio de los mecanismos celulares y su repercusión en clínica. PI16CIII/00007 ISCIII-AESI 2016. 2017-2020 IP: Dr. J. Moreno.
  • Towards an adapted, safe, effective combination treatment for African visceral leishmaniasis (Kala Azar) and improved diagnostic tools-Afri-KA-DIA. RIA2016S-1635. EDCTP-EU. 2017-2021 IP: Dr. J. Moreno.
  • Red de Investigación Colaborativa en Enfermedades Tropicales – RICET. RD16CIII /0003/002. ISCIII - RETICS. 2017-2021. IP: Dr. J. Moreno.
• Convenios / Contratos
  • An Open label, Randomized, Parallel arm Clinical Trial of Two Regimens to Assess the Safety and Efficacy for Treatment of Post Kala-azar Dermal Leishmaniasis (PKDL) Patients in Sudan. Drug for Neglected Diseases initiative – DNDi. 2019-2020. IP: Dra. E. Carrillo.
  • Estudio sobre la Epidemiología y control de la infección por Leishmania infantum en fauna salvaje alojada en parques zoológicos de Madrid: Impacto en Salud Pública. Banco Santander. 3 años.
  • Red de laboratorio de diagnóstico de la enfermedad de Chagas. Acceso al diagnóstico y tratamiento de la Enfermedad de Chagas y estronguiloidiasis en la Comunidad de Madrid. Cinética de ADN libre de T. cruzi en modelos animales de experimentación . Convenio marco con la Fundación Mundo sano. 4 años.
  • Validación de la especificidad y sensibilidad clínica de VIASURE leishmania Real Time PCR detection Kit. Certest Biotec S.L. 1 año.

• Ibarra-Meneses AV, Moreno J, Carrillo E. New Strategies and Biomarkers for the Control of Visceral Leishmaniasis. Trends Parasitol. 2020 Jan;36(1):29-38. Factor de impacto: 6,918 (2019), Decil 1 - Categoria PARASITOLOGY. https://doi.org/10.1016/j.pt.2019.10.005
• Alvar J, Alves F, Bucheton B, Burrows L, Büscher P, Carrillo E, Felger I, Hübner MP, Moreno J, Pinazo MJ, Ribeiro I, Sosa-Estani S, Specht S, Tarral A, Wourgaft NS, Bilbe G. Implications of asymptomatic infection for the natural history of selected parasitic tropical diseases. Semin Immunopathol. 2020 Jun;42(3):231-246. Factor de impacto: 7,480 (2019), Decil 1 - Categoria: PATHOLOGY. https://doi.org/10.1007/s00281-020-00796-y
• Ibarra-Meneses AV, Carrillo E, Nieto J, Sánchez C, Ortega S, Estirado A, Latasa Zamalloa P, Sanz JC, García-Comas L, Ordobás M, Moreno J. Prevalence of asymptomatic Leishmania infection and associated risk factors, after an outbreak in the south-western Madrid region, Spain, 2015. Euro Surveill. 2019 May;24(22): 1800379. Factor de Impacto: 6,454 (2019), Decil 1 - Categoria: INFECTIOUS DISEASES. https://doi.org/10.2807/1560-7917.ES.2019.24.22.1800379
• Botana L, Ibarra-Meneses AV, Sánchez C, Castro A, San Martin JV, Molina L, Ruiz-Gi/ardin JM, Carrillo E, Moreno J. Asymptomatic immune responders to Leishmania among HIV positive patients. PLoS Negl Trop Dis. 2019 Jun 3;13(6):e0007461. Factor de impacto: 3,885 (2019), Decil 1 - Categoria: TROPICAL MEDICINE. https://doi.org/10.1371/journal.pntd.0007461
• Bussotti G, Gouzelou E, Côrtes Boité M, Kherachi I, Harrat Z, Eddaikra N, Mottram JC, Antoniou M, Christodoulou V, Bali A, Guerfali FZ, Laouini D, Mukhtar M, Dumetz F, Dujardin JC, Smirlis D, Lechat P, Pescher P, El Hamouchi A, Lemrani M, Chicharro C, Llanes-Acevedo IP, Botana L, Cruz I, Moreno J, Jeddi F, Aoun K, Bouratbine A, Cupolillo E, Späth GF. Leishmania Genome Dynamics during Environmental Adaptation Reveal Strain-Specific Differences in Gene Copy Number Variation, Karyotype Instability, and Telomeric Amplification. mBio. 2018 Nov 6;9(6):e01399-18. Factor de impacto: 6,747 (2018), Cuartil 1 - Categoria: MICROBIOLOGY. https://doi.org/10.1128/mBio.01399-18

• Técnicas de diagnóstico serológico (IFI, ELISA, DAT, RDT), parasitológico (cultivo, microscopía) y molecular (PCR, nested-PCR, qPCR, LAMP) de leishmaniasis y enfermedad de Chagas.
• Técnicas de caracterización molecular: secuenciación de ADN, RFLP, MLST).
• Técnicas de inmunología para caracterizar la respuesta inmune celular y humoral frente a Leishmania: ensayos de linfoproliferación in vitro, test de estimulación de sangre completa, análisis por citometría de flujo de poblaciones linfoides y agotamiento celular, cuantificación de múltiples citoquinas mediante citometría y Luminex.
• Métodos de infección experimental in vitro en macrófagos y líneas celulares.
• Modelos experimentales animales de infección por L. infantum (ratón y hámster).
• Extracción y liofilización de proteínas solubles. Preparación de leishmanina.
• Crecimiento y criopreservación de cepas de Leishmania y T. cruzi.

Laboratorios de cultivo, laboratorio de procesamiento de muestras, laboratorio libre de ADN, cuarto de citometría, cuarto de termocicladores. Equipamiento para cultivos celulares, cabinas de bioseguridad, estufas de CO2, citómetro de flujo FACScalibur, autoclaves, baños termostáticos, microscopios (ópticos, invertidos, de fluorescencia y con análisis de imagen), centrífugas, citospin, equipos automáticos de ELISA, criobancos, microfugas, equipos de electroforesis, termobloques, termocicladores, instrumentos de PCR a tiempo real (Lightcycler, ABIPrism 7500Fast), robots de extracción de ADN, analizador de quimioluminiscencia,  espectrofotómetros, equipos de HPLC, balanzas, neveras, congeladores (-20ºC y -70ºC), hemocitómetro, analizador de bioquímica sérica, cuartos fríos (4ºC y -20ºC), habitación climatizada (28º C), etc.

El Centro Nacional de Microbiología además dispone de unidades de apoyo a la investigación como son la unidad de biopolímeros, secuenciación automática, genómica, proteómica, microscopía confocal,animalarios P2 y P3, instalaciones para radiactividad, microscopios electrónicos, citometría de flujo, equipo de microinyección, laboratorio de seguridad biológica P3, sala de criocontenedores, sala de congeladores.