Diagnóstico y Referencia: Innovación de técnicas de diagnóstico de helmintosis humanas (desatendidas / importadas / autóctonas): aplicación de enfoques diagnósticos integrales e incorporación de nuevos candidatos diagnósticos. Desarrollo de TDR y técnicas multianalíticas.
Control: Helmintos desatendidos, búsqueda de candidatos vacunales por aproximaciones ómicas. Pruebas experimentales in vitro e in vivo.
Estudios básicos: (i) Estudio de la inmunobiología de la interacción parásito-hospedador en helmintosis desde una perspectiva proteómica e inmunológica (ii) Investigación de nuevas alternativas terapéuticas a partir de moléculas de helmintos para otras enfermedades, con especial énfasis en enfermedades autoinmunes.
Producción de antígenos y controles positivos recombinantes para el desarrollo y la estandarización de nuevos ensayos serológicos aplicados al diagnóstico y control de helmintosis olvidadas. MPY 113/18. Contrato: PI17CIII/00019. Fechas: 02/11/2017 - 02/11/2020. Investigadora principal: Maria Jesus Perteguer Prieto. Entidad financiadora: Instituto de Salud Carlos III. Cantidad financiada: 81.900€.
Red de investigación cooperativa en enfermedades tropicales. Fechas: 31/12/2016 - 31/12/2021. Investigadores principales: coordinado: Agustín Benito; CNM-B: Maria Jesús Perteguer. Entidad financiadora: Instituto de Salud Carlos III. Cantidad financiada (CNM-B): 195.212 euros.
Molecular epidemiological studies on pathways of transmission and longlasting capacity building to prevent cystic echinococcosis infection. EULAC 16/T020067. Fechas: 01/03/2019-01/03/2021 Investigadores principales: IP: Adriano Casulli; ISCIII-Maria J. Perteguer Prieto. Entidad financiadora: H2020-EULAC.
Parasite extracellular vesicles for the treatment of autoimmune diseases. Fechas: 28/12/2018-27/12/2021. Investigador principal: Javier Sotillo Gallego. Entidad financiadora: Instituto de Salud Carlos III. Cantidad financiada: 93.500€.
Desarrollo de nuevos candidatos vacunales frente a uncinarias (hookworm) usando técnicas de edición genética. Fechas: 01/01/2020-31/12/2022. Investigador principal: Javier Sotillo Gallego. Entidad financiadora: Instituto de Salud Carlos III. Cantidad financiada: 66.250€.
Herrador Z., Daschner A., Perteguer M.J., Benito A. Epidemiological scenario of anisakidosis in Spain based on associated hospitalizations: The tip of the icebergClin Infect Dis. 2019 Jun 18;69(1):69-76. doi: 10.1093/cid/ciy853.Factor de impacto: 9.055, Cuartil:Q1, Decil: d1.
Bouchery T, Moyat M, Sotillo J, Silverstein S, Volpe B, Coakley G, Tsourouktsoglou TD, Becker L, Shah K, Kulagin M, Guiet R, Camberis M, Schmidt A, Seitz A, Giacomin P, Le Gros G, Papayannopoulos V, Loukas A, Harris NL. Hookworms Evade Host Immunity by Secreting a Deoxyribonuclease to Degrade Neutrophil Extracellular Traps. Cell Host Microbe. 2020 Feb 12;27(2):277-289.e6. doi: 10.1016/j.chom.2020.01.011.. Factor de impacto: 15.923 Cuartil: Q1, Decil: d1.
Sotillo J., Pearson M.S., Becker L., Mekonnen G.G., Amoahid A.S., van Dam G., Corstjens P.L.A.M., Murray J., Mduluza T., Mutapi F., Loukas A. In-depth proteomic characterization of schistosoma haematobium: Towards the development of new tools for elimination PLoS Negl Trop Dis. 2019 May 15;13(5):e0007362. doi: 10.1371/journal.pntd.0007362. Factor de impacto: 3.885 Cuartil: Q1, Decil: d1.
Herrador Z, Garcia B, Ncogo P, Perteguer MJ, Rubio JM, Rivas E, et al. Interruption of onchocerciasis transmission in Bioko Island: Accelerating the movement from control to elimination in Equatorial Guinea. PLoS Negl Trop Dis. 2018;12: 1–17. doi:10.1371/journal.pntd.0006471. Factor de impacto: 4.487 Cuartil: Q1, Decil: d1.
Hernández-González A, Noh J, Perteguer MJ, Gárate T, Handali S. Comparison of T24H-his, GST-T24H and GST-Ts8B2 recombinant antigens in western blot, ELISA and multiplex bead-based assay for diagnosis of neurocysticercosis. Parasites and Vectors. 2017;10: 1–11. doi:10.1186/s13071-017-2160-2. Factor de impacto: 3.163 Cuartil: Q1, Decil: d1.
Cultivos bacterianos y cultivos celulares.
Técnicas de extracción, amplificación y manipulación de ácidos nucleicos: ARN, ADN, PCR, secuenciación, etc.
Técnicas de ADN recombinantes: Síntesis de cDNAs, genotecas, clonación de genes, producción y purificación de antígenos recombinantes, etc.
Técnicas de análisis proteómico: 2D-geles, espectrómetría de masas.
Técnicas de inmunodiagnóstico, ELISAS, westernblot, etc., puestas a punto en el laboratorio, con la producción de antígenos recombinantes, anticuerpos y péptidos específicos para diferentes enfermedades producidas por helmintos, como oncocercosis, fasciolosis, anisakidosis, etc.
Técnicas MBA (multiple beads assays) en formatos mono y multianalito con tecnología luminex.
Digestión artificial para la obtención de larvas infectantes de Trichinella sp. a partir de muestras de carne.
Técnicas bioquímicas para la caracterización de enzimas (serin, cistein, aspartil proteasas) e inhibidores mediante cinética enzimática y fluorimetría.
Técnicas de edición génica: CRISPR, RNAi.
Técnicas parasitológicas: mantenimiento de cepas de nematodos y trematodos.
El Laboratorio Molecular cuenta con instalaciones acondicionadas y las herramientas necesarias para el trabajo con técnicas de ADN recombinante y producción de antígenos recombinantes: termocicladores, sistemas de electroforesis de ácidos nucleicos y proteínas, nanodrop, sistemas de imagen digital, sistema compacto ÄKTA Pure-UnicornTM para la purificación automatizada por cromatografía de afinidad, etc., ). Así mismo cuenta con equipos para inmunoensayos dispensadores y lavadores automatizados, tanto para ELISAS como para MBA con sistemas magnéticos.
