Grupos de investigación - ENFERMEDADES INFECCIOSAS

Laboratorio de Referencia e Investigación en Hepatitis Víricas. Unidad de Hepatitis. Grupo de Hepatitis Víricas y Coinfección Microbiana


Investigador responsable: Verónica Briz Sebastián. veronica.briz@isciii.es

Entidad: Instituto de Salud Carlos III. CNM

Investigadores:

  • Sonia Arca Lafuente. BioAssays SL
  • Irene Cano Mate. Servicio Madrileño de Salud
  • Sergio Grande García. UAH
  • Manuel Llamas Adam. UAH
  • Paula Martínez Román. CNM. ISCIII
  • Daniel Valle Miralles. CNM. ISCIII
  • Diseño y validación de metodología diagnóstica rápida mediante nanotecnología para la detección de hepatitis virales.
  • Epidemiología molecular y resistencia a los nuevos antivirales de acción directa en pacientes infectados por el VHC.
  • Inmunopatogenia de la coinfección por hepatitis virales crónicas en el reservorio del VIH.
  • Coinfección por VHE y protistas entéricos en el reservorio humano y animal: equilibrio dinámico e infección.
  • Identificación de biomarcadores inmunológicos asociados a las infecciones virales crónicas hepatitis C y VIH relacionados con la infección por SARS-COV-2 y su pronóstico. Identificación:  IND2020/BMD-17373- Doctorado industrial. Organismo Financiador: Comunidad Autónoma de Madrid. Duración: 3 años (2021-2023). IP: Verónica Briz. Pendiente de resolución.
  • Impacto de la erradicación y aclaramiento del VHC con los nuevos antivirales de acción directa, en pacientes coinfectados VIH/VHC en el reservorio VIH en sangre periférica y sistema inmune. Identificación: PI18CIII/00020. Organismo Financiador: Fondo de Investigación Sanitaria (ISCIII). Duración: 3 años (2019-2021). IPs: Amanda Fernández Rodríguez y Verónica Briz. Contrato predoctoral asociado a proyecto.
  • Desarrollo de un sistema de diagnóstico in vitro para la determinación del virus de la Hepatitis C mediante nanosondas. Identificación: IND2017/BMD­7683 – Doctorado industrial. Organismo Financiador: Comunidad Autónoma de Madrid. Duración: 3 años (2018-2020). Investigador principal: Verónica Briz. Contrato predoctoral asociado a proyecto.
  • Validación preclínica de un nuevo método de diagnóstico in vitro para la determinación de la infección por el virus de la hepatitis C en humanos. Identificación: MVP-325/19. Organismo Financiador: BioAssays SL. Duración: 3 años (2019-2021). Investigadora principal: Verónica Briz. Contrato predoctoral asociado a proyecto. Contrato de Titulado superior asociado a proyecto.
  • Palladino C, Ezeonwumelu IJ, Mate‑Cano I, Borrego P, Martínez-Román P, Arca-Lafuente S, Resino S, Taveira N, Briz V. Epidemic history and baseline resistance to NS5A‑specific direct acting drugs of hepatitis c virus in Spain. Scientific Reports 2020, 10: 13024. DOI: 10.1038/s41598-020-69692-7. Autor correspondencia. 1er cuartil. Factor Impacto: 4,011.
  • Martínez-Román P,  López-Huertas MR, Crespo-Bermejo C, Arca-Lafuente S, Cortegano I, Valle-Millares D, Gaspar ML, Martín-Carbonero L, Domínguez-Domínguez L, Ryan P, de los Santos I, De la Fuente-Moral S, Fernández-Rodríguez A, Coiras  M, Briz V. Hepatitis C Virus Influences HIV-1 Viral Splicing in Coinfected Patients. Journal of Clinical Medicine 2020, 9: 2091. DOI:  10.3390/jcm9072091 1er decil. Factor Impacto: 6,78.
  • Rivero-Juárez A, Dashti A, López-López P, Salimo Muadica A, Risalde MA,  Köster PC, Machuca I, Bailo B, Hernández de Mingo M, Dacal E, García-Bocanegra I, Saugar JM, Calero-Bernal R, González-Barrio D, Rivero A, Briz V*, Carmena D*. Protist enteroparasites in wild boar (Sus scrofa ferus) and black Iberian pig (Sus scrofa domesticus) in southern Spain: a protective effect on hepatitis E acquisition? Parasites & Vectors 2020, 13, 281.  DOI: 10.1186/s13071-020-04152-9. Autor correspondencia. 1er decil. Factor Impacto: 3,031.
  • Arca-Lafuente S, Martínez-Román P, Mate-Cano I, Madrid R, Briz V. Nanotechnology: A reality for diagnosis of HCV infectious disease. Journal of Infection 2020:80 (1); 8-15. Autor correspondencia. DOI: 10.1016/j.jinf.2019.09.010. PMID: 31580870. 1er cuartil. Factor Impacto: 5,099.
  • López-Huertas MR, Palladino C, Garrido-Arquero M, Esteban-Cartelle B, Sánchez-Carrillo M, Martínez-Román P, Martín-Carbonero L, Ryan P, Domínguez-Domínguez L, Santos ID, Moral SDLF, Benito JM, Rallón N, Alcamí J, Resino S, Fernández-Rodríguez A, Coiras M, Briz V. HCV-coinfection is related to an increased HIV-1 reservoir size in cART-treated HIV patients: a cross-sectional study. Scientific Reports 2019: 9 (1); 5606. Autor correspondencia. doi: 10.1038/s41598-019-41788-9. PMID: 30944340. 1er cuartil. Factor Impacto: 4,011.

TÉCNICAS CULTIVOS CELULARES:

  • Mantenimiento y utilización de líneas celulares tanto adherentes como en suspensión y de células primarias.

TÉCNICAS DE BIOLOGÍA CELULAR:

  • Transfección de líneas celulares adherentes y en suspensión y nucleofección de células primarias.
  • Aislamiento y purificación de distintos tipos celulares hematopoyéticos (linfocitos T) mediante el uso de Dynabeads y MACS (Magnetic cell sorting).
  • Técnicas de Inmunofluorescencia.

TÉCNICAS DE BIOLOGÍA MOLECULAR:

  • PCR
  • qPCR.

TÉCNICAS DE BIOQUÍMICA:

  • Westen blot y ELISA convencional y multiplex.

CITOMETRÍA DE FLUJO

TECNICAS DE MICROSCOPIA ÓPTICA:

  • Visualización de células, estructuras y proteínas celulares mediante el uso de las técnicas de microscopia de fluorescencia.

NANOTECNOLOGÍA:

  • Identificación y validación de nanosondas mediante técnicas de hibridación frente a ácidos nucléicos.
  • Funcionalización de nanopartículas.
  • Desarrollo de biosensores para la detección de ácidos nucleicos.

TÉCNICAS DE SECUENCIACIÓN:

  • Secuenciación poblacional (Sanger).
  • NGS.
El laboratorio cuenta con el equipamiento básico para la manipulación y análisis de muestras biológicas procedentes tanto de pacientes como de cultivo celular, incluidos 4 termocicladores de PCR en tiempo final, 2 termocicladores de PCR en tiempo real, 2 cabinas de PCR, instalaciones para el cultivo de células eucariotas y manejo de virus infectivos (3 cabinas de bioseguridad para procesar muestras biológicas, cultivo de hepatitis virales, incubadores de CO2 y microscopios invertidos), 5 congeladores de -4ºC y -20ºC, 2 ultracongeladores de -80ºC, centrífuga. También se dispone de infraestructura común del CNM/ISCIII que incluyen una instalación de bioseguridad P3, ultracentrífugas, microscopios de fluorescencia, 1 equipo Luminex-Multiplex (BioRad), etc. El centro dispone también de varias unidades comunes: Citometría de flujo, Genómica, Microscopía Confocal y Bioinformática.