• Caracterización de la malaria submicroscópica y asintomática en inmigrantes africanos (Financiado AESI-ISCIII).
• Aplicación de la Inteligencia artificial en el diagnóstico microscópico de enfermedades parasitarias tropicales (Financiado H2020 &Spotlab).
• Diseño, optimización y validación de métodos de diagnóstico avanzados para la detección de parásitos sanguíneos (Financiado por el MICINN &Biotools S.A.).
• Control de la onchocercosis en Guinea Ecuatorial en colaboración con el CNMTrop-ISCIII (Financiado por TaskForce& OMS).
• Caracterización y control de la Mansonellosis y Onchocercosis en la región Amazónica en Brasil en colaboración con el FIOCRUZ de Amazonas (Brasil) . (Financiado por Cpnqt-Brasil).
• Genotipado de Plasmodiumknowlesi y su implicación como quinta especie de malaria humana en colaboración con el Medical Research Center en Kuala Lumpur, Malasia.
• Capillaria philippinensis y otras parasitosis en Egipto. En colaboración con la Universidad de El Cairo, Egipto. Financiado por el Ministerio de Ciencia de Egipto.
• Estudio de los mecanismos celulares y moleculares que emplea B. divergens, durante su ciclo asexual, para invadir el eritrocito humano, replicarse y posteriormente abandonar a su célula hospedadora en busca de nuevos eritrocitos para invadir.
• Estudio de la inmunidad cruzada entre infecciones causadas por B. divergens y P. falciparum en modelos animales.
• Investigación sobre la patogenia y la incidencia de la babesiosis en humanos, explotaciones ganaderas, animales salvajes y vectores (garraptas) en España.
• Detección de la babesiois humana, la babesiosis bovina y la malaria en poblaciones que conviven con ganado vacuno en África.
• Desarrollo de biomarcadores de diagnóstico y seguimiento de la babesiosis humana y bovina.
• Detección de Babesia spp en pingüinos y garrapatas Ixodes uriae en la isla Decepción, Antártida.

Evaluación del riesgo de reintroducción de la malaria en el sur de España mediante el estudio de los determinantes vectoriales y parasitarios. IP: José Miguel Rubio. Organismo financiador:  AESI. Duración: 01/01/2023 – 31/12/2025. Financiación: 53.000€. Nº de Expediente: PI22CIII/00033

Consorcio Centro de Investigacion Biomedica en Red M.P. CIBER (2021). Área de Enfermedades Infecciosas. Centro Nacional de Medicina Tropical Instituto de Salud Carlos III. IP: Agustín Benito. Organismo financiador: Acción Estratégica en Salud 2017-2020. Duración: 01/01/2022 – 31/12/2026. Financiación anual: 118.000€. Nº de Expediente: CB21/13/00120

Identificación y caracterización de nuevos biomarcadores diagnósticos y/o de infección para la detección temprana y el seguimiento de la babesiosis humana de España. IP: Estrella Montero & Luis Miguel Gonzalez. Organismo financiador: Entidad financiadora: AESI. Duración: 01/01/2021 – 31/12/2023. Financiación: 57.000€. Nº de Expediente: PI20CIII/00037

Filling key research gaps with clinical implications in mansonellosis and schistosomiasis: a network approach. IP: Elena Pomari & Francesca Tamarozzi. Organismo financiador: ESCMID Young Investigator projects. Duración: 01/04/2021-01/04/2023. Financiación: 20.000€

Desarrollo de Nuevas Estrategias de Control Integradas frente a la Oncocercosis, la Filariasis Linfática y la Loiasis. IP: Agustin Benito &   Zaida Herrador Ortiz. Participación: Colaborador Organismo financiador: AESI. Duración: 01/01/2021-31/12/2023. Financiación: 22.000€. Expediente: PI20CIII/00034

Evaluation of a digital health ecosystem using artificial intelligence for microscopic analysis of parasitological samples. IP: José Miguel Rubio. Organismo financiador/Expediente: Spotlab SA subcontrata proyecto EU H2020 SME Instrument - Phase 2. Grant number: 881062. Proyecto co-financiado por la CE, dentro del Programa H2020. Duración: 08/10/2020-31/12/2022.  Financiación: 50.000€

Fernandez N; Revuelta B; Aguilar I; Soares JF; Zintl A; Gray J; Gonzalez LM; Montero E. 2022. Babesia and Theileria identification in Adult Ixodid Ticks from Tapada Nature Reserve, Portugal. Pathogens. MDPI. 11-2, pp.222.

Ramírez AM, Suárez ML, García CM, Hisam SR, Perez-Ayala A, Rubio JM. Usefulness of Malachite-Green LAMP for Diagnosis of Plasmodium and Five Human Malaria Species in a Nonendemic Setting. Am J Trop Med Hyg. 2022 Mar 14:tpmd211151. doi: 10.4269/ajtmh.21-1151. Epub ahead of print. PMID: 35292597.

Martin Ramírez A, Ta Tang TH, Lanza Suárez M, Alvarez Fernández A, Muñoz García C, Hisam S, Rubio JM.  Assessment of Commercial Real-Time PCR Assays for Detection of Malaria Infection in a Non-Endemic Setting. Am J Trop Med Hyg. 2021 Oct 12;105(6):1732-1737. doi: 10.4269/ajtmh.21-0406. PMID: 34662870.

Alvarez-Fernandez A, Bernal MJ, Fradejas I, Martin Ramírez A, Md Yusuf NA, Lanza M, Hisam S, Pérez de Ayala A, Rubio JM.KASP: a genotyping method to rapid identification of resistance in Plasmodium falciparum. Malar J. 2021 Jan 6;20(1):16. doi: 10.1186/s12936-020-03544-7.

Conesa JJ; Sevilla E; Terrón MC; et al; González LM; Montero E.  Four-Dimensional Characterization of the Babesia divergens Asexual Life Cycle, from the Trophozoite to the Multiparasite Stage. mSphere.2020 5-5, pp.e00928-20. https://doi.org/10.1128/mSphere.00928-20.

Martin Ramírez, A., Lombardia González, C., Soler Maniega, T., Gutierrez Liarte, Á., Domingo García, D., Lanza Suárez, M., Bernal Fernández, M. J., & Rubio, J. M. Several Plasmodium vivax relapses after correct primaquine treatment in a patient with impaired cytochrome P450 2D6 function. Malaria journal 2020, 19(1), 259. https://doi.org/10.1186/s12936-020-03326-1. PMID: 32680522

Crainey JL, Costa CHA, de Oliveira Leles LF, Ribeiro da Silva TR, de Aquino Narzetti LH, Serra Dos Santos YV, Costa Conteville L, Costa Pessoa FA, Carvajal Cortés JJ, Vicente ACP, Rubio Muñoz JM, Bessa Luz SL. Deep Sequencing Reveals Occult Mansonellosis Coinfections in Residents From the Brazilian Amazon Village of São Gabriel da Cachoeira. Clin Infect Dis. 2020 Nov 5;71(8):1990-1993. doi: 10.1093/cid/ciaa082.

González LM; Estrada K; Grande R; et al; Montero E. Comparative and functional genomics of the protozoan parasite Babesia divergens highligting the invasion and egress processes PLoS Negl Trop Dis 2019. 13-8, pp.e0007680. https://doi.org/10.1371/journal.pntd.0007680 Asensi, V; González LM; Fernández-Suárez J; et al; Montero E. A fatal case of Babesia divergens infection in Northwestern Spain Ticks Tick Borne Dis.2018, 9-3, pp.730-734. https://doi.org/10.1016/j.ttbdis.2018.02.018

Sevilla E; González LM; Luque D; Gray J; Montero E. Kinetics of the invasion and egress processes of Babesia divergens, observed by time-lapse video microscopy Scientific Reports. 2018, 8-1, pp.14116. https://doi.org/10.1038/s41598-018-32349-7.

• Técnicas de amplificación de ácidos nucleicos incluyendo el uso de las nuevas polimerasas virales.
• Técnicas del ADN recombinante, expresión y purificación de proteínas recombinantes, construcción de genotecas genómica y expresión.
• Genotípico poblacional mediante de amplificación genómica tales como PCR en sus diferentes formas (PCR, Nested PCR, qPCR, rt-PCR), LAMP y otras basadas en amplificaciones mediante análisis de fragmentos.
• Ensayos de inhibición e inmunoprecipitación.
• Inmunoblot, ELISA y aglutinación para la detección de anticuerpos.
• Cultivos celulares.
• Secuenciación sanger.
• Secuenciación masiva de genomas y transcriptomas. Técnicas de Metabolómica.
• Microscopía, videomicroscopía in vivo confocal y electrónica, digitalización de imágenes y videos e Inteligencia artificial.
• Técnicas de caracterización de microvesículas, exosomas y productos de excreción y proteómica.

• Campanas de Seguridad Biológica Clase II.
• Cabinas Flujo Laminar-PCR (x3).
• Robot de extracción automática de ácidos nucleicos (QIAcube x1, QIAsymphony x1).
• Equipos de amplificación genómica (AppliedBiosystem x7).
• Equipos de amplificación genómica con gradiente (BioRad x1).
• Equipo de amplificación genómica a tiempo real (Rotor Gene x3).
• Equipo de electroforesis de ácidos nucleicos automática (QIAxcel x1).
• Microscopio con doble cabezal para docencia.
• Microscopio con equipo fotográfico incorporado.
• Lupa.
• Equipos de electroforesis horizontal y vertical.
• Contador de células.
• Centrifugas, termobloques, agitadores magnéticos, pipetas, etc.
• Neveras, congeladores, estufas, baños refrigerados, agitadores, etc.
• Balanza, balanza de precisión.
• Equipos informáticos.

Además, se cuenta con las unidades centrales del Centro Nacional de Microbiología y del Instituto de Salud Carlos III:

• Laboratorio de Microscopía Confocal y Electrónica.
• Laboratorio de genómica.
• Laboratorio de Histología.
• Unidad de Bioinformática.
• Animalario